Cuantificación de los diferentes
folatos presentes en tomatillo
(Physalis ixocarpa) por
cromatografía de líquidos
de alta resolución
Quantification of folates
in Physalis ixocarpa
by high pressure liquid
chromatography
JOSÉ LUIS IBAVE GONZÁLEZ* Y M. OCHOA
Resumen
En este estudio se identificaron y determinaron las diferen-
tes especies de folatos por medio de cromatografía liquida
de alta resolución en fase reversa, con detección de fluores-
cencia, aunado a un tratamiento trienzimático. La
deconjugación de las cadenas de glutamatos en los folatos
se realizó mediante una columna de afinidad a folatos. La
cantidad promedio de folatos fue de 1.2 µM/100 gramos de
peso fresco. La composición de las principales estructuras
de folatos presentes en Physalis correspondió a 5-metil-
tetrahidrofolato, tetrahidrofolato y 5-formil-tetrahidrofolato. La
valoración de estos importantes metabolitos dentro de la dieta
se ha soslayado debido a la dificultad implícita en su análi-
sis. Es evidente que la falta de esta vitamina está implicada
en el riesgo de defectos del tubo neural y anencefalia, princi-
palmente en embarazos no deseados, donde no se consume
una dieta adecuada de suplementos antes de la concepción.
Este problema puede ser disminuido con la ingesta de fuen-
tes de folatos en la dieta como Physalis ixocarpa.
Palabras clave: tomatillo, folatos, HPLC.
__________________________________
*Profesor-Investigador de la Facultad de Ciencias Agrotecnológicas, Universidad Autónoma de Chihuahua, Campus
1. Chihuahua, Chihuahua, México, 31310. Tel. (614) 4391844 y 45. jibave@uach.mx
Abstract
An efficient quantification method by HPLC was
implemented for folates analysis in Physalis
ixocarpa (husk tomato). A trienzymatic treatment
was used for the initial extraction of folates fol-
lowed by glutamate deconjugation by a folate af-
finity column. The average amount of folates was
1.2 µM/100 grams of fresh weight. The major
folate structures present in Physalis were identi-
fied as 5-methyl-tetrahydrofolate, tetrahydrofolate
and 5-formyl-tetrahydrofolate. The importance of
the methodology stresses the fact that the diffi-
culty implied in the analysis was overcome. Since
this vitamin is involved in several new born dis-
orders such as neural tube defects and anen-
cephaly, it is of great importance to provide such
elements in the diet and Physalis ixocarpa rep-
resents an excellent source of folates.
Keywords: green tomato (husk tomato), folates,
HPLC.
Alimentos
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Introducción
l tomatillo (Physalis ixocarpa) es de amplio uso para la preparación
de salsas y platillos en la cocina mexicana y es una fuente importante
para el suministro de cantidades suficientes de folatos. Los folatos per-
tenecen a las vitaminas del grupo B y son de gran importancia nutricional
E
para el ser humano. Están compuestos de tres partes fundamentales: la uterina,
con diferentes estados de oxidación, que es una molécula de pABA, y final-
mente de residuos de glutamato, los cuales imparten su estabilidad dentro de
la célula. Estos compuestos son necesarios para prevenir enfermedades
cardiovasculares, defectos del tubo neural, anencefalia (Berry et al., 1999;
Czeizel y Dudas, 1992) y cáncer (Giovannucci et al., 1995) por medio de la
donación de un grupo metilo (llamado el ciclo de C1), necesario para la fabri-
cación de purinas y pirimidinas en la biosíntesis de metionina y homocisteína
(Giovannucci et al, 1995). Su consumo es vital para una adecuada división
celular y mantener la homeostasis (Wagner, 1995).
Las diferentes coenzimas in vivo depen-
den de la cantidad y la biodisponibilidad al in-
gerir folatos y después de la pérdida por vía
urinaria, fecal y rutas catabólicas (Mason, 1995;
Boushey, 1995). Estudios recientes estipulan
que el ácido fólico tiene la capacidad de pre-
venir defectos del tubo neural, particularmente
al aumentar el sustrato disponible para la
reductasa termolábil (5,10- methylenetetra-
hydrofolato), lo que resulta en un aumento en la
conversión de los aminoácidos homocisteína y
metionina, y por lo tanto elimina o reduce el ries-
go de que no cierre el tubo neural (Fohr et al.,
2002). Los folatos están relacionados con la
incidencia de anemia megaloblástica maternal,
bajo peso del bebé (Sauberlich, 1995) y alum-
bramiento prematuro (School y Jonson, 2000).
El consumo adecuado de alimentos ricos en
folatos (aproximadamente 392 mg/día) está
asociado con la disminución de un 22% de los
niveles de homocisteína en el cuerpo (Van Oart
et al., 2003). La sensibilidad a la luz, calor y oxí-
geno de esta molécula la hacen susceptible a
los métodos empleados en la preparación de
los alimentos, ya que se pierde gran cantidad al
lixiviarse en el agua de cocción, puesto que es
una vitamina hidrosoluble. El mayor aporte de
folatos en la dieta es por medio del consumo
de verduras.
Lo anterior sustenta la determinación de
la concentración de folatos presente en los ali-
mentos, que es crítica para la división celular,
principalmente en mujeres embarazadas du-
rante las horas iniciales de la concepción y los
primeros tres meses de formación del feto.
Adecuados niveles de folatos previenen pro-
blemas de anencefalia y defectos del tubo
neural. Es determinante asegurar una cantidad
adecuada de estos compuestos en la ingesta
de las mujeres en gestación para evitar ries-
gos al embrión, ya que los folatos son precur-
sores de las bases nucleicas implicadas en la
biosíntesis del ácido desoxirribonucleico.
El objetivo de esta investigación fue iden-
tificar y cuantificar los diferentes tipos de folatos
biológicamente activos en los tejidos de toma-
tillo (Physalis ixocarpa) mediante un método es-
tandarizado y efectivo por cromatografía de lí-
quidos de alta resolución.
Materiales y métodos
En este estudio se utilizó un cromatógrafo de
líquidos de alta resolución (HPLC) de marca HP
modelo 1050 Agilent Instruments modelo 1100,
equipado con una bomba cuaternaria, auto-
muestreador, arreglo de diodos (DAD) con
degasificación por helio y un detector de fluo-
rescencia (FLD), y con una columna Nucleosil
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10
C-18 de 25 mm, 4.6, y 5mM. El HPLC es con-
trolado por una PC con software HP
ChemStation; además de una centrífuga
Eppendorf con temperatura controlada, un
espectrómetro UV/Vis Cary-Varian y un Shaker
New Brunswick modelo CX, Thermolyne 1100.
Para el desarrollo del estudio fueron utiliza-
dos los siguientes materiales: 5-metil-
tetrahidrofolato, tetrahidrofolato, ácido fólico,
5-formil-tetrahidrofolato, dihidrofolato (Sigma-
Aldrich, St. Louis MO.), affi-gel 10 (bio-rad), áci-
do trifluoroacético, folate binding protein (FBP,
Sigma-Aldrich), azida de sodio, acetonitrilo gra-
do HPLC, ácido acético, DL-dithiotreithol
(Sigma-Aldrich) fosfato de potasio monohidrata-
do, fosfato de potasio dihidratado, agua grado
HPLC, á-amilasa (Aspergillus oryzae, Sigma-
Aldrich), proteasa (Streptomyces griseus,
Sigma-Aldrich) y conjugasa pancreática de po-
llo tipo 1 (Sigma-Aldrich).
Todos los compuestos empleados fueron
de la mas alta pureza y las soluciones fueron
filtradas a través de un filtro de nylon 0.22 µm
(Sigma-Aldrich).
La preparación de la columna se realizó
de acuerdo a Gregory y Toth (1988) y Selhub
et al., (1980), con algunas modificaciones. Se
tomaron 9.3 ml de agarosa Biorad Affi-Gel 10,
se colocaron en una cápsula de porcelana, se
hizo lavado con 3 volúmenes de cama con agua
a 4 ºC, se pasaron a un matraz Erlenmeyer de
Figura 1. Tomatillo (Physalis ixocarpa)
en diferentes estadíos fenológicos.
50 ml y se colocaron en un agitador a 4 ºC y a
150 rpm. La proteína folate binding protein
(FBP) se disolvió en un amortiguador de
fosfatos pH 7 y después se añadió la agarosa,
agitándose durante cuatro horas para formar
una buena unión entre ellas. Luego se sacó y
se lavó con buffer de KAc 0.05 M a pH 4.9 tres
veces; posteriormente se empacó y se enjuagó
con KAc 0.05 M en tres ocasiones, para un fi-
nal con tres volúmenes de cama con buffer de
fosfatos.
Para la preparación de análisis de los fru-
tos de tomatillo, se adquirieron éstos en dife-
rentes centros comerciales del estado de
Chihuahua. La extracción de la muestra se lle-
vó a cabo de acuerdo al método de Selhub et
al., (1980) y con las menores modificaciones
propuestas por Gregory y Toth (1988), bajo luz
amarilla de baja intensidad para impedir la
fotodegradación de los compuestos a deter-
minar. A cada frasco de extracto se le agregó
el buffer de extracción pH 7 y se calentó a baño
maría por 10 min a 100 ºC, mientras se agitaba
a 50 rpm durante 10 min. Posteriormente y de
forma inmediata se puso en baño con hielo para
bajar la temperatura y se aplicó una corriente
de nitrógeno para desplazar el oxígeno y evitar
la oxidación. Se centrifugó por 20 min a una
fuerza relativa de 13000 x g a 4ºC, separando
el sobrenadante y redisolviéndose el residuo
agitando de nuevo y centrifugándose por 10
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min a 13000 x g a 4 ºC. Se juntaron los
sobrenadantes y se aforó a 50 ml con buffer
de extracción, lavándose nuevamente con ni-
trógeno. Se tomaron 5 ml del sobrenadante y
se pasaron a través de la columna de FBP an-
tes estabilizada con buffer de extracción de 10
ml y enjuagada con buffer de fosfatos 0.025M
con 1M de NaCl a pH 7. Enseguida se lavó nue-
vamente con buffer de extracción a un flujo de
0.43 ml/min. por gravedad, fluyéndose 0.02M
(TFA)-0.02M (DTT) y lavados consecutivos
0.025M de buffer de fosfatos, conteniendo 1M
de NaCl y de nuevo con buffer de extracción.
La columna de FBP se almacenó con azida de
sodio 0.02 % en buffer de extracción.
El tratamiento trienzimático en los alimen-
tos es necesario para determinar la cantidad
de folatos total presente (Martín y Eintenmiller,
1990). No todos los alimentos se comportan
igual en el tratamiento trienzimático, ya que no
tienen un pH de actividad definida (Tamura et
al., 1997) y son usados para eliminar almidón y
proteínas, que puedan causar interferencia en
diferentes alimentos y por lo tanto incrementar
la cantidad de folatos presentes (Cerna y Kas,
1983; Tamura, 1998). Es por esto que todas
estas técnicas se realizan bajo luz amarilla para
eliminar la fotodegradación. La preparación de
la á-amilasa fue a una concentración de 20 mg/
ml, añadiéndose 2 ml a la muestra por 5 horas
y 37 ºC, mientras que la concentración de la
proteasa fue de 10 mg/ml, añadiéndose 1 ml
por 0.30 g de muestra liofilizada ó 5 g de mues-
tra fresca, preparándose con 0.1M de buffer de
fosfatos a 4.1, ajustando el pH con fosfato
dibásico 0.1M y 57mM de ácido ascórbico por 6
horas a 37 ºC. La conjugasa pancreática (5 mg/
ml) se preparó de acuerdo a Rader et al., (1998)
y Gregory (1984), disolviéndose por 3 horas a
37 ºC en 1.42% de buffer fosfatos, conteniendo
1% de ácido ascórbico a pH de 7.8. Después
se calentó en baño maría por 5 min., con el
objeto de desnaturalizar las enzimas y separar
por filtración en un filtro de nylon 0.22 µm.
Para la detección de folatos se utilizó un
gradiente binario en sistema de cromatografía
de alta resolución en fase reversa, columna C18
nucleosil (150 x 4.6mm x 5 µm) y dos detecto-
res UV y fluorescencia. Todas las soluciones
se prepararon con agua grado HPLC. El extracto
se colocó en fase isocrática con buffer de
fosfatos, con concentración de 30 mM, pH 2.2
y en una relación del 90% de buffer y 10% de
acetonitrilo, seguido de una disminución de éste
último a 85% y 15% respectivamente en los si-
guientes 8 minutos, para volver al estado inicial
en los siguientes 3 minutos. Se utilizó un flujo
de 0.8 ml/min y una longitud de onda de 290 nm
en UV para ácido fólico, mientras que las con-
diciones para el detector de fluorescencia fue-
ron 290 nm de emisión y 356 nm de excitación
para dihidrofolato, tetrahidrofolato y 5-metil-tetra-
hidrofolato. En el caso de 5-formil-tetrahidrofo-
lato se usó una excitación de 360 y 460 nm de
emisión, respectivamente. La fase móvil con un
pH ácido tiende a tener pobres identificaciones
para el 10 formil–tetrahidrofolato, por la conver-
sión a 5-10 metenil-tetrahidrofolato y la reduc-
ción del dihidrofolato a tetrahidrofolato (Díaz
De la Garza et al., 2004; Robinson, 1971).
Resultados y discusión
En una gran cantidad de reportes científicos
se ha tratado de optimizar la preparación de la
muestra y las condiciones cromatográficas para
la obtención de una mayor cantidad de folatos
de los diferentes materiales bajo estudio; sin
embargo, a pesar de todos estos esfuerzos,
sólo se ha llegado a tratar de optimizar la canti-
dad de muestra a extraer, dependiendo de la
capacidad de detección de los aparatos emplea-
dos. Es por ello que al emplear Physalis como
material para cuantificar los niveles de folatos
presentes se tuvo que trabajar en la adecua-
ción del método para garantizar la precisión de
la medición, por medio de la elucidación de la
cantidad mínima a detectar, llegándose a una
conclusión fundamental respecto a la cantidad
mínima de muestra necesaria para lograr
reproducibilidad del método y detectar las con-
centraciones de las diferentes estructuras re-
lacionadas a folatos. Esta situación arrojó que
con un tamaño de muestra de 5 g es suficiente
para estar por encima de los límites de detec-
ción.
La capacidad de las columnas con FBP se
midió con ácido fólico y se obtuvo en promedio
un 92% de recuperación de esta vitamina, con
una desviación estándar de 6.2% y un flujo por
gravedad entre 0.37-0.42 ml/min. Estos valo-
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12
res se utilizaron como factor de corrección para
la cuantificación precisa de los folatos en to-
matillo y determinar la aportación de este im-
portante complejo vitamínico en la dieta.
Los folatos de la matriz del tomatillo ex-
traídos mediante calor tienen una
interconversión del 10-formil-tetrahidrofolato a
5-formil-tetra-hidrofolato. Es por eso que en
ocasiones no se detecta, ya que depende de
la actividad y cantidad que tenga en cada ali-
mento, o las sustancias que se emplean para
evitar oxidación, como el 2-mercaptoetanol. En
este estudio se detectó una elevación del con-
tenido de ácido fólico como resultado de la oxi-
dación del dihidro-folato; además, la importan-
cia del uso de la combinación de dos
antioxidantes (2% w/v ácido ascórbico y 2mM
de 2-mercaptoetanol) da la estabilidad y con-
vierte una cantidad de los folatos presentes en
su forma dihidrofolato a tetrahidrofolato, abrien-
do la posibilidad de identificar y cuantificar las
diferentes derivados de folatos y sus formas
de estados de oxidación. Lo anterior se llevó a
cabo a pH de 4.1 para realizar la reducción del
5-metil-dihidrofolato a 5-metil-tetrahidrofolato,
así como de dihidrofola-to a tetrahidrofolato,
lográndose una mayor detección en fluores-
cencia (Wilson y Horne, 1984; Gregory et al.,
1990; Vahteristo et al., 1996). Estas formas son
de las que se han reportado como de mayor
actividad dentro de las plantas y animales (fi-
gura 2).
Durante la extracción se tiene que prever
la cantidad de proteína y almidón, ya que in-
terfieren en la cuantificación. Asimismo es ne-
cesario tener una aproximación de la concen-
tración posible de folatos que pueden estar pre-
sentes, con el número adecuado de repeticio-
nes para optimizar el tiempo de extracción.
Para lograr la digestión de las proteínas y al-
midones y liberar los folatos unidos a ellos, se
determinó que los tiempos para cada enzima
fueron como sigue: á-amilasa, 6 horas;
proteasa, 2 horas; ã-carboxilasa, 4 horas. Con
estos tratamientos fue posible evitar la degra-
dación térmica de los folatos a pesar de los
tiempos tan largos para la digestibilidad.
La cantidad de folatos medidos usando el
método trienzimático resultó en una precisión
superior al 132% con respecto a la cuantifica-
ción de estos compuestos a través de la ac-
ción exclusiva de la conjugasa, por lo que se
demuestra que los folatos en tomatillo se en-
cuentran retenidos en la matriz celular del teji-
do del alimento.
Para la identificación y la cuantificación de
los folatos fue necesario determinar la longi-
tud de onda apropiada para cada compuesto,
ya que no todos pueden ser identificados a la
misma longitud, por ejemplo, la señal de de-
tección por fluorescencia para dihidrofolato es
muy baja en comparación con las diferentes
formas de tetrahidrohidrofolato.
En los resultados cromatográficos (figuras
3 y 4) se tomó la mezcla racémica de cada
folato como un solo compuesto, ya que es muy
Figura 2. Principales derivados activos de folatos y las diferentes rutas metabólicas
en las cuales están implicados (Ravanel et al., 2001).
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complicado hacer la separación de los
isómeros bajo la metodología empleada.
A pesar de la gran dificultad para la detec-
ción y cuantificación de estos metabolitos como
resultado del pH propio del alimento y que afec-
ta la estabilidad de los mismos, fue posible
obtener una excelente reproducibilidad del
método y buenos resultados en la cuantifica-
ción total de folatos (1.21 µmol/100g, en base a
peso fresco), por lo que se ha podido elucidar
que Physalis ixocarpa es una fuente adecuada
para proporcionar cantidades de folatos impor-
tantes en la dieta.
En el cuadro 1 se muestran las diferentes
formas cuantificadas de folatos en tomatillo,
que presenta niveles importantes del metabolito
5-metil-tetrahidrofolato, el cual se considera el
de mayor significancia biológica. Si asumimos
que la ingesta per capita alcanza niveles de 3.5
kg/año (SAGARPA, 2001), es necesario intro-
ducir campañas para promover su consumo,
porque representa una fuente importante de
folatos. Hay que recordar todos los problemas
asociados con mujeres en edad fértil
(Sauiberlich, 1971; Scholl et al., 2000).
El impacto positivo que tiene el tomatillo
en la dieta, por desconocimiento, se ha igno-
rado, ya que siempre se asocia como produc-
to típico de la comida mexicana. Se analizaron
sus potenciales basándose en la prevención de
defectos de tubos neurales y anencefalia, prin-
cipalmente en embarazos no planeados, me-
diante la cuantificación del aporte de folatos pre-
sentes en este producto.
El uso de la extracción trienzimática fue
efectivo, obteniendo niveles más altos que el
empleo de una sola enzima, la conjugasa. En
el método trienzimático se obtuvieron niveles
de folatos hasta de 1.8 veces por encima de la
conjugasa, debido principalmente a la interfe-
rencia causada por la presencia de polímeros
(almidón y proteínas) que atrapan a este tipo
de compuestos. Sin embargo, su potencial ra-
dica en la prevención de defectos del tubo
neural.
Para una adecuada detección de folatos
en concentración reducida, que es lo que ocu-
rre comúnmente en los alimentos, se requiere
utilizar métodos de separación e identificación
con técnicas de alta sensibilidad (Vahteristo et
al., 1996), empleando cromatografía de líqui-
dos de alta resolución con detección de fluo-
rescencia, con límites inferiores que oscilan
entre 0.03 a 2.3 pmol/100µL en el punto de in-
yección (Gregory et al., 1984). Además de ser
un método rápido en comparación con el co-
múnmente empleado (que se basa en una prue-
ba microbiológica), también permite determi-
nar las diferentes especies de folatos presen-
tes como monoglutamatos y poliglutamatos, así
como sus estados de oxidación.
Figura 4. Identificación de diferentes especies
derivada de folatos como monoglutamatos con
detector de UV y arreglo de diodos ( ë 290 nm) en
Physalis ixocarpa.
Figura 3. Análisis con detector de fluorescencia
para la identificación de diferentes especies deriva-
das de folatos como monoglutamatos (exitación
290, emisión 356) en Physalis ixocarpa.
Cuadro 1. Cantidades de los diferentes
estructuras derivadas de los folatos
presentes en tomatillo (Physalis ixocarpa).
Compuesto
Ácido Fólico
5 formil-tetrahidrofolato
Dihidrofolato
Tetrahidrofolato
5 metil-tetrahidrofolato
Total
Cantidad µmol/100 g
(media)
0.185
0.4152
———
0.0912
0.5226
1.2114
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14
La más alta concentración de folatos se
logró al tratar las muestras a pH de 4.1, ya que
inhibió la actividad de la enzima conjugasa
endógena contenida en la matriz del alimento
y por lo tanto afectó la extracción de este tipo
de compuestos (Gregory et al., 1990). A este
pH se optimizó la actividad de la proteasa y
amilasa para la extracción completa de los
folatos del tejido del tomatillo. Es probable que
algunos de ellos se encuentren atrapados en
proteínas y carbohidratos y, por consiguiente,
tienen que ser sometidos a un proceso de di-
gestión para su liberación y correcta cuanti-
ficación en el alimento.
Al terminar el proceso de extracción de los
folatos se recomienda inmediatamente inyec-
tarlos, ya que al ser almacenados a bajas tem-
peraturas se reduce su concentración, debido
al deterioro y destrucción por exposición a la
luz.
El total de las formas de folatos antes del
tratamiento trienzimático es significativamente
diferente después del tratamiento trienzimático
(Nehmatallah, 2003), o se incrementa la con-
centración de compuestos, principalmente de
conversión de dihidrofolatos a tetrahidrofolatos,
ya sea por conversión como resultado de la tem-
peratura, extracción ácida y el uso de
antioxidantes (Lucock et.al., 1995). De forma
similar, empleando como fluyente de la colum-
na el ácido trifluoroacético y DL-dithiotreithol, se
pueden perder derivados del folato como 5-
HCO-THF, que tiene una gran inestabilidad a
pH bajos y puede convertirse parcialmente a
5,10 metenil THF (Robinson, 1971).
Conclusiones
Este es el primer reporte en la literatura en
donde se ha trabajado con tomatillo (husk
tomato), que resulta ser una excelente fuente
de folatos, por lo que su consumo o introduc-
ción en la dieta, sobre todo en mujeres con po-
tencial de gestación, representa un alimento
ideal para evitar o reducir el índice de defectos
del tubo neural y anencefalias en recién naci-
dos. Se ha establecido una metodología para
la identificación y cuantificación de los diferen-
tes folatos presentes en Physalis ixocarpa
empleando una modificación en la metodolo-
gía por HPLC, basada en un detector de fluo-
rescencia que ofrece rapidez y precisión, su-
perando lo reportado en donde se emplean en-
sayos microbiológicos, que muchas veces no
son tan sensibles en la cuantificación por ser
cantidades muy pequeñas de folatos en los
alimentos. Aunado a lo anterior, se cuenta con
una excelente técnica de extracción de folatos
de la matriz por el método trienzimático y la
afinidad de folatos en columnas con proteínas
inmovilizadas para la purificación de la mues-
tra.
Durante la extracción se dio una variación
de los resultados con una desviación estándar
de 6.2%, debido a que se compraron tomatillos
en diferentes tiendas y diferentes fechas (entre
febrero y abril), que pueden cambiar en su com-
posición debido a factores bióticos y abióticos
teniendo variaciones en la cantidad de folatos o
bien expresándose más algunos folatos debido
a su actividad interna en el tomatillo.
Los niveles de folatos encontrados en
Physalis permiten elucidar su importancia como
alimento constitutivo en una dieta que ayude a
preparar balanceos nutrimentales entre los ti-
pos de alimentos que debemos consumir, prin-
cipalmente para mujeres en edad reproductiva.
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